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      T、B淋巴細胞分離

      發布時間: 2022-03-11  點擊次數: 1507次

      原理

      淋巴細胞與用溴花二氨基異硫氫化物(簡稱AET)處理的綿羊紅細胞(SRBC)混合后,其中全部T淋巴細胞均能吸附AET-SRBC,形成牢固穩定而巨大的E-花環,較正常未處理的SRBC形成的E-花環百分比為高,而且形成快速,不易脫落,重復性好。再經淋巴細胞分層液分離時,AET-E花環易沉于管底,而未形成E-花環的T淋巴細胞,用低滲液解花環周圍的 AET-SRBC,便可獲得純T淋巴細胞,而B淋巴細胞可直接取自分層液的界面。

      材料與儀器

      新鮮豚鼠血
      Hanks液 小牛血清 199培養液 生理鹽水 氯化鈉溶液
      離心管 離心機

      步驟

      1.  AET-RRBC制備


      (1)AET溶液的制備
      稱取AET粉劑402毫克,溶于10毫升蒸餾水中,使成為0.143 M 溶液,用4N NaOH溶液調pH9.0。該溶液必須新鮮配制,不宜久存。

      (2) AET處理RRBC
      取洗滌好壓積的RRBC,按一份壓積AET—RRBC加入4份新鮮配制的pH9.0的AET溶液充分混勻置37℃水浴15分鐘,每隔5分鐘搖勻一次。取出加冷無菌生理鹽水至離心管口(1~2厘米)1800轉/分離心5分鐘。連續洗滌3-5次,每洗一次,必須充分搖勻,以減少AET-RRBC粘附成團,并觀察有無溶血。若有溶血現象,則用含小牛血清的199培養基再洗一次,最后配成10%AET-RRBC懸液,置4℃保存,不得超過5天。

      (3)1%AET-RRBC的配制:
      將預先配制并保存于4℃冰箱的10%濃度的AET-RRBC,以含10%小牛血清的199培養液稀釋至1%。

      2.  從新鮮豚鼠血液分離單個核細胞,操作見后試驗。

      3.  AET—E花環試驗:
      將分離的單個核細胞(2x106/毫升)與等量1%AET-RRBC混合,置37℃水浴15分鐘,每隔5分鐘搖勻一次,分裝數管,每管2—3毫升,低速離心(1000轉/分鐘)5分鐘后,移至4℃冰箱45分鐘。

      4.  T淋巴細胞和B淋巴細胞的分離
      將形成E-花環的細胞懸液,再用淋巴細胞分層液分離,吸取界面云霧狀的細胞,即為富含B淋巴細胞群。沉淀于管底的E-花環,用Hanks液洗一次后,加雙蒸水3毫升處理3分鐘,低滲裂解E-花環周圍的RRBC,立即加3.5%氯化鈉溶液1毫升,使還原為等滲,低速離心沉淀,即得富含T淋巴細胞群。


      注意事項


      1. 分離B細胞過程較長,為了避免B細胞自然死亡,在最后沖洗B細胞時可以用1640,而且要加入5一10%的小牛血清。


      2. 每次洗滌時,不要將試管底部液體吸干,即防止壓積的B細胞接觸空氣。


      3. 使用抗B淋巴細胞血清與受檢細胞按NIH方法進行微量B細胞毒試驗,使用倒置相差顯微鏡讀數。


      常見問題


      關于從小鼠脾臟中分離:


      1.脾臟組織所含結締組織比較少,可以直接在篩網上研磨,無需剪碎,也不用顧慮血管。


      2.ficoll中含多聚糖,所以許多人喜歡把它放4度存放,是否室溫對實驗影響不大脾臟分離淋巴細胞實驗比較簡單,所以用普通的淋巴細胞分離液就行。


      3 .離心2000rpm×20min,這步很關鍵,還有就是加細胞懸液時一定要貼壁緩慢加入,不要破壞分界面,分離液與細胞懸液我常用1:2,還有就是所選用的離心管粗細也會影響分層。


      4.中間的懸浮白色環狀細胞層即是所要的淋巴細胞層。


      5.洗細胞主要是洗去分離液,所以不能省去。


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